砷剂对小鼠皮肤朗格汉斯细胞数量与功能的影响_柳敏
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砷剂对小鼠皮肤朗格汉斯细胞数量与功能的影响_柳敏
1000CHINJDERMVENEREOL2013年10月第27卷第10期
Oct.2013,Vol.27,No.10
砷剂对小鼠皮肤朗格汉斯细胞数量与功能的影响柳敏,田晶,王阳,杨蕾芳,张佩
[摘要]目的As2O3)对小鼠皮肤朗格汉斯细胞(Langerhanscell,LC)数量及功能的影响,观察砷剂(As,以期
制备C57BL/6小鼠表皮单细胞悬液,经不同浓度As处理,探讨As外用治疗皮肤病的机理。方法
MTT法观察As对全表皮细胞数的影响,寻找适宜浓度。使用该浓度进一步处理细胞,观察As对表皮中LC的相对数量的影响。通过流式细胞仪观察As对表皮LC抗原摄取能力及成熟能力的影响。结果highAs处理48h后,全表皮细胞数量从2uM开始显著减低。2uMAs处理后LC被分成MHCⅡ,
highlowhighMHCⅡlow两个亚群,并且MHCⅡ/MHCⅡ亚群的比例呈降低趋势。进一步观察MHCⅡ细胞亚
+high显示MHCⅡ表达增强,而Langerin显著降低,差异均有统计学意义。CD80及CD86LC细胞群群,
比例显著降低,而CD86lowLC亚群显著升高。CD80+LC比率降低的同时伴随CD80的表达强度减弱,
As影响LC在皮肤中的比例。2uMAs通过影响LC表面MHCⅡ分子、CD86low的LC中CD86的平均荧光强度显著增加。MHCⅡlowLC丧失抗原摄取能力,MHCⅡhighLC的抗原摄取能力也显著降低。结论
核内Langrin分子的表达,影响LC的成熟能力及抗原摄取能力,进而影响LC相关皮肤免疫。[关键词]砷剂;朗格汉斯细胞;角质形成细胞;成熟;抗原摄取
[中图分类号]R739.5[文献标识码]A[文章编号]1001-7089(2013)10-1000-05EffectsofArsenicontheNumberandFunctionofLangerhansCellinMouseSkin
LIUMin,TIANJing,WANGYang,YANGLei-fang,ZHANGPei
(DepartmentofImmunology,LiaoningMedicalCollege,Jinzhou121001,China)
[Correspondingauthor]ZHANGPei,E-mail:jyzhangpei@http://wendang.chazidian.com
[Abstract]ObjectiveToobservetheeffectsofAs2O3(As)onthenumberandfunctionofskinLangerhanscell(LC)in
SingleepidermalcellsuspensionsordertorevealthemechanismwherebyAstreatsskindiseases.Methods
fromC57BL/6miceweretreatedwithdifferentconcentrationsofAstodetermineanappropriateconcentrationusingMTTmethod.EffectofAsonLCphagocytosisandmaturationwereassessedwithFACS.ResultsThenumberofcellsbecamelessafterincubationwith2uMAsfor48h.FollowingAstreatment,theratiosofMHCⅡhightoMHCⅡlowbegantodecrease.MHCⅡhighexpressedsignificantlyhigherlevelsofMHCⅡandlowerlevelsofLangerin.ThepercentageofCD80+andCD86highLCwasdecreased,butthepercentageofCD86lowLCwassignificantlyincreased.Moreover,theintensityofCD80stainingwasreduced,whereastheintensityofCD86staininginCD86lowLCwasincreased.MHCⅡlowLCpopulationlostfunctionofantigenphagocytosis,andthephagocyticfunctionofMHCⅡhighLCwasalsodecreased.Conclusion
Langrin,andLCmaturationandantigenphagocytosis.
[Keywords]Arsenic;Langerhanscell;Keratinocyte;Mature;AntigenphagocytosisAsaffectsthepercentageofLCinskin.2uMAsaffectsskinimmunitythroughaffectingtheexpressionofMHCⅡand
LC)是髓源性免朗格汉斯细胞(Langerhanscells,
[1]疫细胞之一,迁移定居至皮肤后通过自我更新来维
,LC稳态可随条件改变如皮肤炎症等,
[3]发生相应的变化。研究显示LC与多种皮肤疾病有持恒定数量
密切联系:在早期与晚期发生的银屑病之间LC动员
[4]有明显差异,与正常人相比,早期发生的银屑病中
[作者单位]辽宁医学院,辽宁锦州121001
[E-mail:jyzhangpei@163.com通讯作者]张佩,[2]单核细胞起源的LC表型和功能似乎并未有明显改[5]变。LC在异位性皮炎患者皮肤中的数量、密度有所减低,同时其形态特征和在皮肤中的分布也有改[6]LC还参与白癜风、Bowen病等疾变,接触性皮炎、[7-9]。这些数病,尽管在部分报道中的变化趋势有差异据均说明LC在众多疾病的发生发展过程中有重要作用。As)既是毒性物质又是人体中正常砷剂(Arsnic,既可以诱发肿瘤,又可以对多种疾病存在的微量元素,
中国皮肤性病学杂志2013年10月第27卷第10期ChinJDermVenereol,Oct.2013,Vol.27,No.10·1001·
发挥治疗性生物学作用。砷剂对免疫系统有着广泛复
杂的影响,有证据表明As对皮肤中最重要的免疫细胞LC也有确切影响。As可以改变皮肤中LC相关的生
[7]
长刺激因子和炎症细胞因子的分泌。在As诱导的Bowen病中,LC数目和树突数量减少[10-11]。目前对于As临床局部外用于皮肤引起的生物学效应了解甚少。因此本课题拟研究As对皮肤LC数量及功能的影响,以期探讨As外用治疗皮肤病的机理,并借以认识多种LC异常相关皮肤病发生的机理。1
材料与方法
1.1材料4~6周龄,SPF级C57BL/6小鼠。雌性,每次实验使用3只小鼠,实验重复3次。主要试剂如CD45.2,CD207,CD80,CD86抗体购抗MHCⅡ(IAe),
Dex-自BDBioscience公司。As2O3购自Sigma公司,tranFluorescein,Dispase购自Invetrogen公司。完全培10%灭活FBS,5×105M2-养基包括RPMI1640,巯基
0.15%碳酸氢钠,1mMMEM丙酮酸钠,1×非必乙醇,
需氨基酸及双抗。主要仪器器材有细胞培养箱(For-mascientific),Perkin流式细胞仪BD(BDBiosciences),
Elmer2030(PerkinElmer)。主要分析软件有SPSS15.0(IBM),FlowJo7.6.5(FlowJo)。1.2
小鼠皮肤单细胞悬液制备CO2处死小鼠,电推
4~5mLNair溶解残留鼠毛,剪剪掉小鼠毛发,组织剪
450g离心5min,养48h。收集培养处理后的细胞,弃
上清。清洗后重悬细胞于200μL染色缓冲液待用。1.5
抗原摄取实验上述细胞转移至5mL流式管,加入100μL0.5mg/mLDextranFluoresceinsolution37℃
5%CO2培养箱孵育45min,设一额外同条件4℃标本
450g离心为阴性对照。3~4mL预冷1×PBS清洗,
3min弃上清,CD16/32FcRblock液4℃重复2次。Anti-MHCⅡ,antiCD45.2避光阻断非特异染色15min。Anti-4℃避光30min。清洗2次后用流式细胞仪抗体标记,
分析。1.6
LC体外成熟实验重悬1~2×106细胞于2mLCM37℃5%CO2中培养72h。收集培养处理后的培养基,
IAe,anti-CD80,anti-细胞阻断非特异染色后经Anti-CD86抗体4℃,避光孵育30min。预冷staining缓冲液清洗2次。100μLFixation/Permeabilizationsolution重4℃避光20min,200μL1×BDPerm/Wash洗悬细胞,
0.5μLanti-Langerin抗体4℃,液清洗2次,避光孵育30min,200μL1×BDPerm/Wash洗液清洗2次,
400μL2%福尔马林固定液固定,流式细胞仪分析。1.7
统计学处理MTT结果输入统计学分析软件SPSS15.0,采用单因素方差分析,并进行Dunnettttest
比较各浓度组与对照组之间的差异;流式结果由Flow-Jo7.6分析,分析数据进一步输入GraphPadPrism5.0,采用t检验进行统计分析并绘图。以P<0.05为差异有统计学意义。2
结果
2.1As对皮肤细胞生长的影响As处理48h后,MTT结果显示,相对于正常对照组,细胞数量从2uMDunnettt检验显示P=0.039;大于开始有显著减低,2uM浓度As处理后,P<0.01,细胞数量进一步减低,见图1。由此,笔者在后续实验中选择有轻微生物学影响的2uM浓度继续处理细胞,观察As对LC的影响
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获取小鼠皮肤,解剖刀刮除皮下组织,皮肤剪成约1cm
×1cm小片。将皮片放置于10mL0.25%dispase中37℃(5%CO2)孵育1h。分离表皮加入6mLCM和700μL1mg/mLDNase溶液,37℃震荡水浴锅中孵育,震荡70次/min。使用100μm孔径尼龙筛网过滤细
6
450g离心5min,胞,弃上清,计数细胞并调至2×10cells/mL备用。1.3
用CM完全培养基将上
6
述细胞悬液进一步稀释至0.5×10个/mL。As处理1,2,4,8,20uM6个浓度(0uM为不加药终浓度为0,
对照孔),各设6个复孔。培养板放至湿盒,于37℃5%CO2孵育48h,在药物作用期结束时,去除所有含有细胞的孔中的培养基。每孔中各加入200μL新鲜37℃湿润的培养基和50μLMTT。铝箔包裹培养板,
环境中温育4h。终止培养,小心弃去孔中的培养基和MTT,在所有孔中各加入200μLDMSO,振荡10min后加入甘氨酸缓冲液(每孔25μL)。立即在570nm处记录吸光值。
1.4细胞培养及As处理
将待用细胞加入12孔板,
6
每孔2×10cells用CM完全培养基将As稀释至合适
AS对皮肤细胞的影响
图1Fig.1
As对皮肤细胞生长的影响EffectofAsonLCproliferation
浓度,使终浓度为2uM,每孔终体积为2mL,并设不加药对照。将12孔板放于37℃5%CO2湿润环境中培
2.2
As对LC数量的影响2uMAs处理后LC在皮肤细胞中的相对比例。设门于FSCSSC中较为集中的主
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·1002·中国皮肤性病学杂志2013年10月第27卷第10期ChinJDermVenereol,Oct.2013,Vol.27,No.10
++
细胞团后,流式数据显示LangerinCD45.2双阳性细胞(LC)数量有轻微减低,从1.11±0.12到0.99±0.13,P=0.0071),显著降低(t=11.79,差异均具有统计学
意义。2.4
As对LC成熟能力的影响
表皮细胞在12孔
37℃,5%CO2湿润环境中培养48h后,MHC经anti-板,
anti-Langerin以及与LC成熟相关的标志抗体anti-Ⅱ,
anti-CD86抗体标记。首先选择Langerin+MHCCD80,
+
CD86Ⅱ双阳性细胞群(LC),然后进一步观察CD80,
P=0.0429),差异有统计学意义(t=4.67,见图2。
2.3As对LC中MHCⅡ及Langerin表达的影响筛
++
选LangerinCD45.2双阳性细胞,进一步观察MHC
high
MHCⅡlow两Ⅱ细胞亚群。可见LC被分成MHCⅡ,
highlow
并且MHCⅡ/MHCⅡ亚群的比例呈降低个亚群,
P=0.0040),趋势(t=15.70,见图3。进一步观察MHC
high
Ⅱ细胞亚群Langerin及MHCⅡ的表达强度,显示
LC被分为CD80-,的表达。如图4,可见按CD80表达,CD80+两个亚群;而按CD86表达,LC被分为CD86-,
CD86low和CD86high三个亚群。CD80+及
low
CD86highLC细胞群比例显著降低,而CD86
MHCⅡ表达增强(t=68.23,P=0.0002),而Langerin
LC亚群显著升高,差异均有统计学意义(t=7.69,P=0.0165)。不同的是,CD80+LC比率降低的同时伴随CD80的表达强度减弱,差异P=0.0179),有统计学意义(t=7.38,而CD86highLC的平均荧光强度没有变化,差异无P=0.1146),CD86low的统计学意义(t=2.694,
图2Fig.2
As对LC数量的影响EffectofAsonLCratio
LC中CD86的平均荧光强度显著增加,差异有P=0.0090)
内容需要下载文档才能查看。统计学意义(t=10.48,
图3Fig.3
As对LC中MHCⅡ及Langerin表达的影响EffectofAsonexpressionofMHCⅡand
内容需要下载文档才能查看Langerin
图4Fig.4
As对LC成熟能力的影响EffectofAsonLCmaturation
中国皮肤性病学杂志2013年10月第27卷第10期ChinJDermVenereol,Oct.2013,Vol.27,No.10·1003·
2.5
As培养处理后
dextran共孵育45min后,的LC,与0.25mg/mLFITC-MHCⅡ和anti-CD45.2抗体标记,经anti-选择MHC
++++
ⅡCD45.2双阳性LC,进一步分析MHCⅡ/FITC
As对LC抗原捕获能力的影响
MHCⅡlowLC几携带抗原的LC的比例。如图5可见,
high
乎丧失抗原捕获能力,而MHCⅡLC的抗原捕获能P=0.0029),力也显著降低(t=18.60,差异有统计学意义
内容需要下载文档才能查看。
图5Fig.5
As对LC抗原捕获能力的影响EffectofAsonLCphagocytosis
3讨论
CD4+T向Th2发展,起到炎症抑制作用。用抗CD86CD4+T细胞和CD8+T细抗体处理过的动物小鼠中,
并且这种对T细胞的共同刺胞产生的细胞因子减少,激不能由LC表达的CD80来补偿
[15-16]
砷剂对角质形成细胞的作用已经有非常广泛深入
的研究,低浓度As(<1uM)对角质形成细胞有刺激增殖作用,高浓度主要表现为抑制作用。
朗格汉斯细胞来源于骨髓,为皮肤内的主要抗原呈递细胞
。LC在处理半抗原的过程中,由“静止”
“活化”状态转化为的功能状态。活化过程中LC表现
[13]
[12]
。结合本研究中
发现,笔者认为As通过降低CD80表达的数量和密度
来达到免疫抑制效果,而CD86表达的数量和密度的变化趋势相反,提示As对CD86的抑制作用相对弱于CD80,As对CD86的综合效应甚至没有减低,这些结果反而提示As对该培养系统起到免疫抑制作用。长期As接触所诱导的Bowen病皮损中LC数量显著减少,也说明As通过抑制LC免疫监视能力,而诱发肿瘤
[17]
MHCⅡ类分子、为表面MHCⅠ类分子、黏附分子、协同
CD86(又称为b7-1,b7-2)的表达增刺激分子CD80,加
[13]
。因此MHC分子及协同刺激分子在抗原递呈过
程中发挥重要作用。
MHCⅡ分子在LC中表达增强,本研究中观察到,
似乎提示As作用下的LC抗原递呈能力增强。然而,除此之外,笔者收集到更多LC免疫抑制的证据。首
MTT结果提示2uMAs对皮肤细胞的生长有抑制先,
LC的相对比例更是显著作用,在此受抑制的系统中,降低,提示LC对As更为敏感。此外,虽然在MHC的LC亚群中MHCⅡ的平均表达强度有所增加,而在整体LC群体中,其细胞数量比例显著减低,此现Ⅱ
象与国外报道一致:砷剂暴露可以减低小鼠宫颈淋巴
[7]
结中MHCⅡ(Ia+)细胞数量,说明多数细胞的免疫能力受到抑制。
LC活化成熟的能力对其发挥免疫学作用有至关重要的影响。笔者在研究中观察到协同刺激分子CD80,CD86在表达比例及强度方面均受到明显影响,根据表达强度LC分成不同的亚群,并提示As对CD86和对CD80的影响机制相异。
CD86生物学作用存在差异,文献报道CD80,在半CD80,CD86可以促使CD4+T细抗原致敏感过程中,
胞向两个不同的亚型Th1和Th2型发展。CD80诱导
CD4+T细胞向Th1发展,促进炎症的发生;CD86诱导
[14]
high
。
本实验中不排除As可以通过KC来间接影响LC
的表型。正常人LC与来自银屑病患者角质形成细胞的上清培养液共孵育48h后,拥有不规则突起的细胞
其刺激T淋巴细胞增殖的明显较正常组增多。同时,
能力也增强,提示免疫刺激增强,而As治疗难治性银
屑病所取得的疗效机制可能就是As对整个皮肤系统的免疫抑制及其对相应KC的增殖抑制
[18-20]
。
综上所述,笔者认为本研究结果提示As对皮肤中
LC有确切的免疫抑制作用,这可能解释了As诱导某些疾病的发生以及As作为治疗药物起到良好疗效的潜在免疫学机理。受限于LC难于富集,本研究未观察As处理后LC与T细胞混合培养的刺激效应,条件成熟时可以进一步观察As对LC影响的综合效应。在皮肤免疫中,真皮内DC虽然数量少,但目前的研究发现其生物学作用也很重要,在某些方面甚至占据主导地位,因此真皮DC研究极有潜力。
[参
考
文
献]
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[收稿日期]2013-04-01[修回日期]2013-06-01
医学论文写作中常见错别字正(误)
综合征(症、证)适应证(症)症状(征状)征象(像)横膈(隔)惟一(唯)啰音(罗)荧光屏(莹)难辩(难辨)萎靡(痿靡)即便(既便)转换酶(转化)注:括号中为错误用法
症状(征状)禁忌证(症)成像(象)成分(份)纵隔(膈)辐射(幅)发热(烧)预后(愈)辩论(辨)蔓延(漫延)瓣膜(办膜)粘(zhan)音
征象(像)循证医学(症)摄像(象)部分(份)膈肌(隔)覆盖(复)骨骼(胳)血流(液)动力学辨证论治(辩)阿司匹林(斯)解剖(介剖)粘连、粘贴、粘合
特征(证)合并症(证)图像(象)年份(分)急躁(燥)幅度(辐)水肿(浮肿)卒中(中风)艾滋病(爱)传导(道)符合(附)黏(nian音)
妊高征(证)并发症(证)分裂象(像)身份(分)烦躁(燥)多普勒(谱)脉搏(博)心肌梗死(梗塞)弥漫(迷)即使(既使)亲和力(亲合)黏膜、黏液
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