超富集植物吸收富集重金属的生理和分子生物学机制

本文从植物生理和分子生物学角度简要评述超富集植物 对重金属元素的吸收、富集、螯合及区室化的机制.

应用生态学报　2003年4月　第14卷　第4期　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　

CHINESEJOURNALOFAPPLIEDECOLOGY,Apr.2003,14(4)∶627～

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超富集植物吸收富集重金属的生理和

3

分子生物学机制

李文学　陈同斌

33

(中国科学院地理科学与资源研究所环境修复室,北京100101)

【摘要】　与普通植物相比,超富集植物在地上部富集大量重金属离子的情况下可以正常生长,其富集重金

属的机理已经成为当前植物逆境生理研究的热点领域.尤其是近两年,随着分子生物学等现代技术手段的引入,关于重金属离子富集机理的研究取得了一定进展.通过与酵母突变株功能互补克隆到了多条编码微量元素转运蛋白的全长cDNA;也从分子水平上研究了谷胱甘肽、植物螯合素、金属硫蛋白、有机酸或氨基酸等含巯基物质与重金属富集之间的可能关系.本文从植物生理和分子生物学角度简要评述超富集植物对重金属元素的吸收、富集、螯合及区室化的机制.关键词　超富集植物　重金属　生理学机制　分子生物学机制文章编号　1001-9332(2003)04-0627-05　中图分类号　X171.5　文献标识码　A

Physiologicalandmolecularbiologicalmechanismsofheavymetalabsorptionandaccumulationinhyperaccu2mualtors.LIWenxue,CHENTongbin(LaboratoryofEnvironmentalRemediation,InstituteofGeographicalSciencesandNaturalResourcesResearch,ChineseAcademyofSciences,Beijing100101,China).2Chin.J.Ap2pl.Ecol.,2003,14(4):627～631.

Incomparisonwithnormalplants,hyperaccumulatorshavetheabilitytoaccumulateheavymetalsintheirshootsfarexceedingthoseobservedinsoil,withoutsufferingfromdetrimentaleffects.Withthehelpofmoleculartech2nologies,theresearchonthemechanismsofheavymetalaccumulationinhyperaccumulatorshasbeenmadeagreatprogress.Anumberoftraceelementtransportershavebeenclonedbyfunctionalcomplementationwithyeastmutantsdefectiveinmetalabsorption.Therelationsbetweenglutathione,phytochelatinsmetallothioneins,organicacidsandheavymetalshavebeenstudiedbymoleculartechnologies.Thisreviewconcentratedonthephysiologicalandmolecularmechanismsofheavymetalabsorptionandsequestrationinhyperaccumulators.Keywords　Hyperaccumulator,Heavymetal,Physiologicalmechanisms,Molecularbiologicalmechanisms.

1　引　　言

土壤重金属污染是一个重要的环境问题,传统的治理主要采用物理或化学方法,费用高,对大面积的污染效果差;与传统措施相比,植物修复技术以成本低、操作简单等优点而倍受青睐.广义上的植物修复是指利用植物去除土壤、水体或空气中重金属、有机污染物等污染物的技术,包含植物萃取(Phytoextraction)、根际过滤(Rhizofiltration)、植物挥发

(Phytovolatilization)、植物固定(Phytostabilization)等技术,现

研究进行评述.

2　重金属离子吸收的分子生物学机制

　　遏蓝菜属(ThlaspiL.)植物具有非常强的富集Zn的能

力,能够在地上部富集高达3%(干重)的Zn,同时植物正常生长,没有表现出任何中毒症状,它已经成为研究重金属富集机理的模式植物之一.但无论是超富集植物或是普通植物,金属离子进入植物体内的第一步是根系吸收,也就是说吸收过程很可能是超富集植物富集重金属离子的第一个限速步骤.T.caerulescens与T.arvense同属于遏蓝菜属,T.

caerulescens能够富集Zn而T.arvense则不具此能力,通过

在通常提到的植物修复主要是指植物萃取[32].

超富集植物(Hyperaccumulator)是植物修复的基础,国际上已发现400多种超富集植物,国内对于超富集植物的研究相对较晚,研究较为系统的当属As、Zn等重金属的超富集植物

[2,3,33]

比较它们对Zn2+的吸收动力学发现:两者Km值差异不大,但T.caerulescens的Vmax要比T.arvense高3.5倍[21],表明T.caerulescens富集Zn2+的能力并非是与Zn2+有更高的亲和力,而很可能是因为锌离子的流入量加大所致,也就是说在T.caerulescens根系细胞膜上分布有更多的锌离子转

3国家自然科学基金项目(40071075)、中国科学院知识创新工程重点方向

()项目KZCX22401202和王宽诚博士后工作奖励基金资助.33通讯联系人.E2mail:chentb@http://wendang.chazidian.com2002-07-05收稿,2002-11-28接受.

.与普通植物相比,重金属离子进入超富集植物

体内同样经过吸收/转运、富集/转化/矿化等生理生化过程,而且许多重金属离子进入植物体内的离子通道与必需营养元素相同,这就决定了超富集植物必然具有独特的生理代谢过程.关于这些过程的研究已经成为新的研究热点.本文对有关超富集植物吸收和富集重金属离子的生理及分子机制

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卷

questration)密切相关,但是此基因与ZIP基因家族明显不

运蛋白.

近年来随着分子生物学等现代技术手段的引入,人们对金属离子如何进入细胞有了新的认识.通过对酵母突变株进行功能互补克隆到了多条编码微量元素转运蛋白的全长

cDNA,其中研究最多的是ZIP基因家族(ZRT,IRT-likeProtein).ZIP基因家族分布非常广泛,在真菌、动物、植物等

同,仅含有6个跨膜区[34];(2)对已知转运蛋白的性质研究还不清楚,金属离子转运蛋白对底物专一性不强,造成多种吸收途径同时对一种金属离子发挥作用,所以在进行具体的分子生物学研究时,必须清楚那些转运蛋白对该金属离子起作用;(3)现在转运蛋白的研究主要集中于根系,叶片中转运蛋白的研究相对较少,但是对超富集植物而言,重金属离子在地上部的含量要远远高于根系,即叶片中的转运蛋白很可能起到更为主要的作用.

真核细胞中均发现了ZIP基因家族成员.ZIP基因编码的蛋白一般具有8个跨膜区,C2端和N2端的氨基酸均位于细胞膜外.此家族包含至少25个成员,zrt1、zrt2(zinc2regulated

transporter)和irt1(iron2regulatedtransporter)是最早克隆到

的ZIP基因.zrt1、zrt2均由酵母中获得,与Zn的吸收密切相关[36,37];irt1编码的蛋白主要位于拟南芥的根系,体内缺

Fe时可诱导irt1表达[8].

3　木质部运输

　　在木质部存在大量的有机酸和氨基酸,它们能够与金属离子结合,这种复合物是重金属离子在木质部中运输的主要形式.譬如在木质部,Fe主要是以柠檬酸铁的形式存在,Zn主要是与柠檬酸或苹果酸结合,而Cu随着植物不同可与天冬酰胺酸、谷氨酸、组氨酸或烟碱结合,当然也有许多是以离子形态存在的,如Ca、Mg、Mn.在超富集植物中研究较多的为组氨酸.Kramer等[19]发现,组氨酸与Alyssummontanum富集Ni的能力密切相关,当植物地上部Ni含量高时,木质部中组氨酸含量也较高,外源组氨酸的加入也能显著促进

Ni装载入木质部,从而提高Ni向地上部的运输.然而,最近

另一类与金属离子吸收有关的蛋白是Nramp基因家族

(Naturalresistanceassociatedmacrophageproteins).Nramp基

因家族编码的蛋白一般具有12个跨膜区,这与ZIP基因家族明显不同.Nramp最初在哺乳动物中发现,植物中的研究主要集中于水稻(Oryzasativa)和拟南芥(Arabidopsis).O2

ryzasativa和Arabidopsis的Nramp基因家族分为2类,Os2

Nramp1、OsNramp3和AtNramp5属于一类,OsNramp2、At2Nramp1、AtNramp2、AtNramp3与AtNramp4属于另一类.Nramp基因家族在植物中的功能现在仍不清楚,AtNramp3

的研究表明,组氨酸反应很可能并不是Ni超富集植物的普遍机理.Persans等[25]在研究Ni的超累积植物Thlaspi

geosingense时并没有发现His反应,同时他们克隆了控制His

和AtNramp4能够维持Arabidopsis体内铁离子的平衡[29].此外,AtNramp3很可能与Ca2+的吸收有关,破坏AtNramp3基因可增加植物对Cd的耐性,过量表达则导致植物对Ca2+的超敏感性.

对于超富集植物而言,Zn的吸收过程研究相对较清楚.通过与酵母突变株进行功能互补,Pence等[24]在具有富Zn能力的T.caerulescen中克隆到znt1.znt1编码Zn2+转运蛋白,属ZIP基因家族,缺Zn和Zn供应充足条件下均可以在根系和叶片中高量表达,表明其可能是组成型表达;对于不具有富Zn能力的T.arvense而言,znt1主要在缺Zn件下表达,供Zn时,表达明显受到抑制.这种表达方式的不同很可能是造成Thlaspi富Zn能力差异的主要原因之一.Assun2

cao等[1]的研究结果也表明Zn转运蛋白基因T.caerulescen

合成的关键酶基因thg1、thb1、thd1,其表达量并没有随着

Ni用量的增加而升高.

　　重金属由根系进入木质部至少需要3个过程:进入根细胞,由根细胞运输到中柱,装载到木质部.在内皮层由于凯氏带的存在,使得共质体运输在重金属进入木质部的过程中起到主导作用.在共质体运输中起关键作用的是膜转运蛋白,然而直到现在还没有在木质部中克隆到与重金属离子运输相关的基因,这方面的研究,尤其是在研究超富集植物时应该引起充分的重视.与普通植物相比,超富集植物能够高效、迅速地把重金属离子由根系运输到地上部,而通过凯氏带是重金属离子进入木质部主要屏障之一,探明此过程,将有利于提高植物修复的效果.

的表达量要远高于T.arvense.从Pence等[24]、Assuncao等[1]与Lasat等[21]的实验结果可以发现根系Zn转运蛋白基因的表达量与Thlaspi富集Zn的能力正相关,初步验证了吸收过程是超富集植物富集重金属离子的首个限速步骤的假设.

但是目前还不能肯定转运蛋白是否在超富集植物吸收重金属方面起到决定性作用.譬如说,尽管znt1、znt2在T.

caerulescen的表达量要远高于T.arvense,但是它们在具有

4　对金属离子的解毒机制

411　谷胱甘肽(GSH)

　　许多金属离子是植物必需的微量养分,它们参与植物体内众多的生理代谢过程.但如果含量过高,尤其是具有氧化还原活性的金属,会对植物产生毒害作用,这种毒害作用很可能是由于自由基的形成造成的.GSH含巯基,具有很强的氧化还原特性,可有效地清除活性氧等自由基,因此GSH在植物抗逆境胁迫中起重要作用.GSH为三肽,结构通式为γ2γGlu2Cys2Gly,合成主要通过两步依赖于ATP的反应完成,2

EC合成酶和GSH合成酶是其中的关键酶.γ2EC合成酶由gsh1编码,GSH合成酶由gsh2编码,gsh1与gsh2在拟南芥

不同富集能力T.caerulescen中的表达量几乎相同[1],即

T.caerulescen富集能力的差异与吸收并无太大的相关性.造

成此现象的原因很可能在于:(1)一般来说,转运蛋白由一个基因家族控制,而现在得到的克隆还不足以代表整个家族,许多未知的基因可能起到更为重要的作用,如在T.

caerulescen就又克隆到zat基因,它与Zn

2+

的区室化(Se2

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基因组中均以单拷贝的形式存在.

　　正常条件下,GSH的合成依赖于半胱氨酸的活性,同时存在明显的反馈抑制现象,表明由γ2EC合成酶催化的反应是整个合成的限速步骤.重金属胁迫条件下,重金属离子激活植物螯合素的合成,消除了GSH的反馈抑制作用,由GSH合成酶催化的反应也成为限速步骤,此时如果加强gsh2的表达,则既可增加植物螯合素的合成又能避免GSH的耗竭,从而缓解重金属胁迫.Zhu等[38,39]的实验结果验证了此假设.他把大肠杆菌的gsh1与gsh2分别转入到印度芥菜

(Brassicajuncea),发现印度芥菜对Cd2+的耐性与富集能力

已明确PCs在植物解Cd毒中起到重要作用,PCs2Cd复合物是Cd由细胞质进入液泡的主要形式.正是由于PCs在重金属离子区室化中所起的重要作用,近年来PCs已成为植物抗重金属胁迫的研究热点之一.

　　目前PCs的分子生物学研究基本集中于普通植物或耐性植物,而有关超富集植物的研究相对较少.Schmoger等[28]在用As处理过的蛇根木(Rauvolfiaserpentina)悬浮细胞及拟南芥幼苗中发现了PCs,Hartley2Whitaker等[17]在绒毛草

(Holcuslanatus)上也证实了上述现象.但这些植物多属于耐

性植物.Ebbs等[7]的实验表明,无论是否具有富集能力,

Thlaspi用Cd处理后都会有大量PCs的合成,但是T.ar2vense中PCs的总量要高于T.caerulescens,说明PCs与植物

均有明显增加,且耐性和富集能力还与gsh2的表达正相关.然而,Foyer等[10]把gsh2转入白杨树(Populus)后,白杨树抗氧化胁迫的能力(光抑制)并没有增加;Goldsbrough等[13]的结果也表明gsh2转入野生型的拟南芥后并不能增加其对

Cd的抗性.由此可见,如何通过基因工程改造GSH,以增加

富Cd能力之间并无太大的关系.由于PCs在超富集植物中的研究还很少,所以PCs在超富集植物是否起到重要作用还有待于深入研究.

　　Cobbett、Rea和Schroeder等3个研究小组于1999年分别在拟南芥、小麦、酵母中克隆到了编码PC合成酶的全长

cDNA.其中,通过对拟南芥cad1突变株(含有与野生型相似

植物对重金属的耐性和富集能力还有待于进一步研究.

412　植物螯合素(PCs)

　　植物螯合素(PCs,=cadystinsinS.pombe)由植物体内一系列低分子量、能够结合金属离子的多肽组成,其结构通γ式为(2Glu2Cys)n2Gly(图1),一般来讲,n为2～5,最高可达

11

[5]

的GSH含量,但不含PC)定位克隆获得AtPCS1[16],小麦耐

Cd基因AtPCS1与TaPCS1主要是通过与酵母突变株功能

.现已发现多种PC的同功异构体,主要是C端的Gly

互补得到[4,30].对PC合成酶相应的全长cDNA对齐比较发现其保守区位于N端,同一性高达40%.长时间Cd2+处理

cad1突变株也没有发现PCs的合成,表明PCs的合成可能是

被β2Ala、Ser取代形成.原来认为植物螯合素仅存在于植物中,但是随着研究的深入,陆续在线虫、蚯蚓等克隆到PC合成酶的类似基因.

　　PCs不能由基因直接编码,必须在PCs合成酶的催化下完成[14].PC合成酶为四聚体,分子量95000道尔顿,等电点在pH4.8附近,最适反应温度和pH分别为35o℃、7.9[14].然而,由克隆到的编码PCs的全长cDNA推测的结果与此不符,推测结果表明PCs不是多聚体,分子量为42000～70000道尔顿,这种偏差很可能由于在Grill等提纯的酶中PCs并不是主要成分造成的.不同重金属离子诱导PCs合成的能力有很大差别[15],一般为Cd2+>Pb2+>Zn2+>Sb3+>Ag+>

Hg2+>As5+>Cu+>Sn2+>Au3+>Bi3+;不同重金属离子

由单基因控制[18].但随着拟南芥基因组测序的完成,发现了与AtPCS1高度同源的AtPCS2基因[16],其功能尚不清楚,但与AtPCS1相比,其表达量非常低.但植物在长期的进化历程中把AtPCS2作为功能基因保留下来,尽管其在正常条件下表达量很低,可以想象在某些器官或环境下,AtPCS2基因的表达肯定会起到重要作用

.

诱导PC合成酶活性的能力与诱导PCs合成的能力稍有不同[35]:Cd2+>Ag+>Pb2+>Cu+>Hg2+>Zn2+>Sn2+>

Au3+>As5->In3+>Tl3+>Ge4+>Bi3+>Ga3+.关于PCs

功能研究得相对清楚的是PCs与Cd之间的关系(图2).现

图2　以Cd为例说明谷胱甘肽、植物螯合素在抗重金属胁迫中的作

(用+表示增加基因表达或酶活性,-表示减少基因表达或酶活性,HMT1表示位于液泡膜上的PC2Cd转运蛋白),参见Cobbert[5]并作修改

Fig.2FunctionofGSHandPCinthemetaltoleranceofplantsundermetalstress(+and2indicatepositiveandnegativeregulationofenzymeactivitiesorgeneexpression,respectively;HMT1isavacuolarmeme2branetransporterofPC2Cdcomplex;revisedfromthefigureofCob2bert[5]).

413　金属硫蛋白(MT)

　　金属硫蛋白(Metallothioneins)是自然界中普遍存在的一种低分子量、富含半胱氨酸的蛋白质.它与PCs的本质区别在于MT由基因直接编码,而PCs在PCs合成酶的催化下完

图1　植物螯合素的化学结构示意图

Fig.1Chemicalstructureofphytochelatin.

成.与PCs一样,金属硫蛋白能够通过巯基与金属离子结合,从而降低重金属离子的毒性,它对于Zn2+和Cu2+的解毒效

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定进展,但至今对其分子和生理机制仍不是很清楚,研究人员的看法也存在明显的分歧.在把超富集植物用于实践的过程中,首先要研究清楚对超富集植物富集的生理基础,譬如重金属离子如何进入根细胞,在木质部如何被运输,在叶片中如何分布;其次要注意不同生理过程的联系,就吸收而言,它其实是根系吸收与体内再分配的有机结合,所以在利用基因工程方法增加重金属离子吸收量时,不仅要考虑到增加根系的吸收位点,提高转运蛋白底物的专一性,同时要注意细胞器,尤其是液泡膜上与重金属离子区室化相关膜蛋白的表达,只有这样,才会达到比较好的效果;最后要强调的是学科交叉与渗透,Dhankher等[6]将细菌中的砷酸盐还原酶ArsC基因和γ2谷氨酰半胱氨酸合成酶(γ2ECS)在拟南芥的叶子中表达,这样运输到地上部的砷酸盐在砷酸盐还原酶的作用γ下转化成亚砷酸盐,2ECS表达可增加一些连接重金属(如亚砷酸盐)并解除其毒性的化合物,将这些复合物限制在叶子中,从而使植物能够积累并忍耐不断增加的As含量.参考文献

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果尤为明显[23].

　　植物中首先鉴定的MT是Ec蛋白,它由小麦成熟胚芽中分离得到.在植物中已发现大约50种MT,根据半胱氨酸残基的排列方式,可以将其分为Ⅰ型、Ⅱ型、Ⅲ型和V型,大多属于Ⅰ型和Ⅱ型.Ⅰ型中的半胱氨酸残基仅有Cys2Xaa2

Cys一种排列方式;Ⅱ型中的半胱氨酸残基有两种排列方

式,分别为Cys2Cys、Cys2Xaa2Xaa2Cys.编码I型MT的cDNA在根系的表达水平较高,编码Ⅱ型MT的cDNA主要在叶片表达.

　　金属硫蛋白极易水解,尤其植物中的金属硫蛋白氨基酸链比较长,极易在半胱氨酸区水解,同时金属硫蛋白在有氧的条件下非常不稳定,所以难以获得相应蛋白质的资料,目前仅对小麦Ec蛋白及拟南芥MT1、MT2编码的蛋白进行了纯化,这就限制了对MT类似基因功能的研究.Murphy等[22]证实Cu2+诱导拟南芥MT2表达,而且表达强度与不同基因型抗Cu胁迫的能力密切相关;Nathalie等[13]的研究结果也证实Cu的耐性植物Silenevulgaris耐Cu胁迫的特性与MT2b的表达紧密联系.王剑虹等[31]在重金属耐性植物紫羊茅草(Festucarebra)中克隆到mcMT1的全长cD2

NA,此基因编码70个氨基酸,含有12个Cys残基,在N端

和C端分别含有3个Cys2Xaa2Cys结构,将此基因转入到酵母MT基因缺失突变株中发现,mcMT1的表达增加了酵母细胞对Cu、Cd和Pb的抗性.在拟南芥和蚕豆中,MT主要在毛状体中表达[9,12],而Cd等许多有毒重金属离子也在毛状体中累积[27],暗示MT和重金属累积有某种联系.

414　细胞壁的固持与区室化作用

　　植物细胞壁残基对阳离子有高亲和力,可以影响重金属离子向细胞内扩散速率,从而影响金属离子的吸收.比较黄花茅(Anthoxanthumodoratum)悬浮细胞和原生质体固Pb能力发现,Pb浓度对从耐Pb细胞克隆分离的悬浮细胞无太大影响,而原生质体的死亡率上升,相应地,从Pb敏感细胞克隆分离的悬浮细胞和原生质体对Pb极其敏感,表明细胞壁在Anthoxanthumodoratum抗Pb胁迫中起到重要作用[26].需要明确的是,细胞壁对金属的固定作用不是一个普遍的抗金属毒害的机制,例如抗Zn毒和Zn敏感型菜豆的细胞壁物质表现出相似的亲和力,同时细胞壁有一定的金属容量,而超富集植物能够在地上部富集大量的重金属离子,暗示细胞壁不可能在超富集植物中起到重要作用.最近的研究表明,区室化作用与超富集植物富集重金属离子的能力密切相关.就Thlaspi而言,具有富集能力的T.geosingense液泡中Ni的含量要比不具有富集能力的T.arvense高1倍[20];

Frey等[11]也证实Zn在T.caerulescens中主要分布于表皮细

胞液泡中.但区室化作用是否为超富集植物富集重金属离子的一个普遍机理还需对新发现的超富集植物进一步研究才能确定.

5　研究展望

　　关于超富集植物富集重金属离子的研究虽然取得了一

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作者简介　李文学,男,1973年生,博士后.主要从事植物营养遗传与重金属污染生态学研究,在国内外发表论文8篇.E2mail:liwx@http://wendang.chazidian.com

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